動物模型-英瀚斯-動物模型制作

實驗動物的除毛
一、實驗動物的除毛
在動物實驗中，被毛有時會影響實驗操作與觀察，因此必須除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脫毛等。
(一)剪毛法：剪毛法是將動物固定后，先用蘸有水的紗布把被毛浸濕，再用剪毛剪刀緊貼皮膚剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪*皮膚。剪下的毛應集中放在一容器內，防止到處飛揚。給狗、羊等動物采血或新牛放血制備常用此法。
(二)拔毛法：拔毛法是用拇指和食指拔去被毛的方法。在兔耳緣靜脈注射或尾靜脈注射時常用此法。
(三)剃毛法：剃毛法是用剃毛刀剃去動物被毛的方法。如動物被毛較長，先要用剪刀將其剪短，再用刷子蘸溫肥皂水將剃毛部位浸透，然后再用剃毛刀除毛。本法適用于暴露手術區。
(四)脫毛法：脫毛法是用化學藥品脫去動物被毛的方法。首先將被毛剪短，然后用*蘸取脫毛劑，在所需部位涂一薄層，2～3分鐘后用溫水洗去脫落的被毛，用紗布擦干，再涂一層油脂即可。
適用于狗等大動物的脫毛劑配方為：10g，生石灰15g，溶于100ml水中。
適用于兔、鼠等動物的脫毛劑的配方為：1. 3g，肥皂粉1g，淀粉7g，加適量水調成糊狀；2. 8g，淀粉7g，糖4g，甘油5g，硼砂1g，加水75ml；3. 8g溶于100ml水中。
闌尾炎動物模型
方法 成年大鼠，動物模型，后固定，無菌條件下開腹，將闌尾及末端回腸和與闌尾系膜相連的腸段(下稱臨近腸段)移出腹腔并置壁上。剪開闌尾尖部的闌尾系膜，把闌尾尖部腸內容物擠至闌尾近端腸腔內，距尖部1cm處用1號絲線將闌尾管攀結扎。把結扎了的闌尾尖部擺放在回腸根部和臨近腸段之間。用小圓針細絲線(000號)把回腸根部和臨近腸段相應位置縫合一針(僅穿透漿肌層)，后將結扎闌尾包埋于其下。再順續沿末端回腸由遠端至近端與臨近腸段相應位置緊密縫合1～2針，將闌尾全部包埋在縫合的腸段之下。將外置的全部腸段送入腹腔，動物模型制作，兩層縫合關腹，無菌紗布包扎傷口，送回籠中飼養觀察。或成年家兔，實驗動物，后固定于手術臺架上，備皮消毒鋪巾后，無菌條件下腹正中切口開腹6cm，尋及盲腸提出闌尾，于闌尾根部以4號絲線緊貼闌尾壁穿過系膜結扎闌尾，隨后將闌尾納回腹腔，逐層關腹。術后，在規定的時間點測定動物體溫，行壞死闌尾炎腔內容物*培養，包囊或壞死闌尾大小的檢測，以及肉眼病理觀察和組織形態學改變的鏡檢。
特點 大鼠術后15d，闌尾呈膿性壞死，外裹一層纖維性包囊，囊內含有大量的*，模型成功率高。兔術后6～12h，闌尾充血、增粗、水腫；12～24h時，闌尾腫脹、增粗更為明顯，外被膿苔與周圍腸管粘連，部分闌尾壁可見斑點狀出血灶，腹腔內有膿性滲液出現。與闌尾膿苔粘連的周圍腸管亦呈明顯的水腫、充血，甚或有闌尾系膜形成。腹腔滲液*培養有大腸生長。術后24h，兔體溫可升至40℃左右。在整個造模過程中，模型動物神態萎靡，不食不飲，腹部脹滿，2～4d內陸續。
實驗動物的給法
(一)注射給藥法
1. 皮射 注射時用左手拇指及食指輕輕捏起皮膚，右手持將針頭刺入，固定后即可進行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或側下腹部；豚鼠在后大腿內側、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；蛙可在脊背部淋巴囊注射；狗多在大腿外側注射，拔針時，輕按片刻，防藥液逸出。
2. 皮內注射 此法用于觀察皮膚血管的通透性變化或觀察皮內反應。 如將一定量的性同位素溶液、顏料或致炎物質、等注入皮內，觀察其消失速度和局部血液循環變化，作為皮膚血管通透性觀察指標之一。方法是：將動物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮試針頭緊貼皮膚皮層刺入皮內，然后使針頭向上挑起并再稍刺入，即可注射藥液。注射后可見皮膚表面鼓起一白色小皮丘。
3. 肌肉注射 當給動物注射不溶于水而混懸于油或其他溶劑中的時，常采用肌肉注射。肌肉注射一般選用肌肉發達、無大血管經過的部位，多選臀部。
注射時針頭要垂直快速刺入肌肉，如無回血現象即可注射。給大、小鼠作肌肉注射時，選大腿外側肌肉進行注射。
4. 腹腔注射 先將動物固定，腹部用酒精*擦試消毒，然后在左或右側腹部將針頭刺入皮下，沿皮下向前推進約0.5厘米，再使針頭與皮膚呈45 度角方向穿過腹肌刺入腹腔，此時有落空感，回抽無腸液、尿液后，緩緩推入藥液。此法大小鼠用的較多。
5. 靜脈注射 是將藥液直接注射于靜脈管內，使其隨著血液分布全身，迅速奏效。但排泄較快，作用時間較短。
小鼠、大鼠的靜脈注射：常采用尾靜脈注射。鼠尾靜脈共有3根， 左右兩側和背側各1根，兩側尾靜脈比較容易固定，故常被采用。操作時，先將動物固定在暴露尾部的固定器內(可用燒杯、鐵絲罩或粗試管等物代替)，模型動物，用75％酒精*反復擦試使血管擴張， 并可使表皮角質軟化，以左手拇指和食指捏住鼠尾兩側，使靜脈充盈，注射時針頭盡量采取與尾部平行的角度進針。
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